产品涵盖临床免疫诊断、分子诊断、高通量测序和生命科学研究等领域
AAV中和抗体假病毒

·产品介绍

本产品是以腺相关病毒为骨架,根据靶向需求替换不同血清型衣壳蛋白,两者结合产生的嵌合病毒。该假病毒结构仅具有单轮感染能力,可模拟野生病毒进入细胞后与抗体中和的过程,同时该假病毒包含荧光素酶(Luciferase)报告基因核酸序列,方便对后续中和实验数据整理分析。本产品安全性好,操作简单。


·产品结构示意图


AAV示意图.png


·预期用途 

1、抗AAV病毒血清中和抗体效价测试;

2、抗AAV病毒单克隆抗体滴度检测。 



丨检测原理 

中和抗体可由感染病原体或接种疫苗产生,可以特异识别病毒表面的抗原位点,阻止病毒入侵细胞繁殖,保护机体免受其害,具有真正的抗病毒作用。该AAV假病毒含有病毒的中和抗原,且具有单轮感染细胞的能力。有中和活性的样品在与假病毒作用后,会发生中和反应,降低AAV病毒感染能力,导致携带的报告基因Luciferase表达量减弱。通过多功能酶标仪读取每孔的荧光素酶表达量,将待测样品孔的数值与假病毒对照组的数值进行比较,可判断样品是否具有中和活性,并计算出样品的有效作用浓度。计算50%假病毒被抑制时抗体的稀释倍数的倒数即中和抗体滴度


AAV感染效果图.png

以AAV8型为例,感染293T细胞72 h后荧光素酶表达


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  • AF2-FV319
  • Adeno-associated virus2-Luciferase
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  • Adeno-associated virus8-Luciferase
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丨实验材料

1、实验试剂 

293T细胞、DMEM、胎牛血清、PBS、0.25%胰酶、血清或抗体、荧光素酶检测试剂盒。

2、实验设备 

生物安全柜、荧光倒置显微镜、CO2 细胞培养箱、离心机、多功能酶标仪、Elispot读数仪、水浴锅、移液器(单道、多道)、电动移 液器、96孔板、酶标板。


丨实验流程(以血清样本为例)

HPV流程.png

AAV中和抗体假病毒实验流程图

丨实验步骤 

1、细胞铺板 

取对数生长期的 293T 细胞进行胰酶消化,计数后制成 1 x 105  cells/mL 细胞悬液,96 孔板每孔接种 100 µL 细胞液,置于 37℃、5%CO2 细胞培养箱中继续培养;

2、血清准备 

a)血清样品置于56℃水浴锅中加热30 min(建议加热,去除补体干扰); 

b) 稀释:使用DMEM培养基对血清样本分别进行系列梯度稀释,作为独立血清样品进行中和抗体检测。

3、假病毒稀释

从-80℃超低温冰箱中取出假病毒置于冰上或4℃条件下融化,待其完全融化后短暂离心,使病毒液聚集于保存管底,依据报告中假病毒滴度和实验方案设计进行系列稀释(1TCID50=1荧光斑点);建议96孔板每孔加入0.1µL假病毒液。 因假病毒对不同来源的293T细胞感染效率不同,建议正式实验前进行预实验,以确定最适病毒量

4、待测血清样品和假病毒稀释液预孵育 

将稀释的待测血清样品与假病毒稀释液进行等体积混合,同时设置细胞对照(DMEM培养基,100 µL/well)假病毒对照(假病毒稀释液与DMEM培养基等体积混合),放入37℃、5%CO2培养箱中孵育1 h。 

5、感染细胞

孵育结束后各取100 µL混合液(包括细胞对照、假病毒对照)贴壁缓慢加入已经接种好细胞的96孔板对应孔中,贴着工作台面轻轻划“十”字混匀,放入37℃、5%CO2培养箱中培养72 h。

6、感染检测 

病毒感染细胞72 h后,取出96孔板置于荧光倒置显微镜下观察绿色荧光蛋白表达效率,拍照记录; 使用Elispot荧光斑点计数仪进行检测,计算感染抑制率(%); 

7、结果判定

1)结果判断:中和抗体检测实验过程中需设置假病毒对照、细胞对照,来判定实验是否成立。

image.png


丨注意事项

1)因细胞水平检测受细胞类型、细胞培养状态、环境条件等影响较大,客户需要根据自身条件确定细胞量、病毒加入量等关键实验参数;建议提前进行预实验,通过预实验计算出合适的假病毒使用浓度;

2)本产品仅供AAV抗血清或中和抗体滴度体外检测;

3)假病毒、待测样本避免反复冻融,建议启用后依据实验需求分装储存;

4)血清梯度稀释时注意不要产生气泡;

5)所有实验操作过程均需要在生物安全柜内进行,实验过程中产生的废弃物均需进行高压灭菌处理;

6)假病毒为微量体积,使用前请短暂离心后再取样进行操作。